1. Barese Cecilia, Pech Nancy, Dircheri Sara, Meyers Justin, Sinn Anthony L., Yoder Mervin C., Goebel Scott, Dinauer Mary C. "Granulocyte Colony-Stimulating Factor Prior to Nonmyeloablative Irradiation Decreases Murine Host Hematopoietic Stem Cell Function and Increases Engraftment of Donor Marrow Cells" The Stem Cell Niche, March 2007; doi: 10. 1634/stemcell. 2006-0808. 

2. Kim Sungjin, Song Yun-Jeong, Higuchi Darryl A., Kang Hyunseok P., Pratt Jennifer R., Yang Liping, Hong Caron M., Poursine-Laurent Jennifer, Iizuka Koho, French Anthony R., Sunwoo John B., Ishii Shunsuke, Reimold Andreas M., and Yokoyama Wayne M. "Arrested Natural Killer Cell Development Associated with Transgene Insertion into the Atf2 Locus" Blood, Feb 2006; 107: 1024-1030

附錄：關于HER2(轉)

HER2是一種位于乳腺和乳腺癌細胞表面的受體，能夠控制癌細胞的生長、浸潤和癌細胞的轉移，大約20%的乳腺癌病例中HER2基因和/或蛋白水平增加，這些HER2陽性的腫瘤是一種高危腫瘤，對某些常規的化療和****反應性差，通常預后不好。為此，多種阻斷HER2的****相繼問世，其中目前*為常用并經FDA批準的此類**是曲妥珠單抗（赫賽汀），適用于**HER2過度表達的乳腺癌。由于這種**只有針對HER2基因擴增和蛋白過度表達的病人才有效，因此準確評價HER2基因和蛋白水平是至關重要的。
FDA已經批準的檢測方式為**組化（IHC）和熒光原位雜交方法（FISH），顯色原位雜交方法（CISH）也已申報FDA等待批準。由于CISH與FISH方法相比具有符合率高、成本低、標本可長期保存等特點，目前被國內外許多檢測機構采用。作為篩查病人是否使用赫賽汀的**手段，上述方法經過國內外臨床的實踐檢驗證明是可行的。但是，還有近1/4的病人由于檢測結果不準確而接受了不當的**。美國有一項調查顯示，IHC檢測HER2蛋白過表達的錯誤陽性率平均為18%，FISH檢測HER2基因擴增的錯誤率在13%，造成這種情況的原因是多方面的，盡管很多實驗室也在使用FDA批準的檢測試劑盒，但是近半數的實驗室所使用的方法都會或多或少與FDA批準的步驟有所不同，比較集中的表現在兩個環節：（1）許多實驗室未使用中性福爾馬林固定，市場上商品化的各種固定劑名目繁多，由于**等方面的原因，我們實際并不知道真實成分；（2）新型自動化設備對組織進行快速處理，其所使用的**固定劑和快速的組織處理時間都和以往有所不同，所以參照FDA認可的方法對現有方法進行比對就變得十分必要。考慮到**需要昂貴的費用和**本身所具有的毒副作用（主要是心臟），美國臨床腫瘤協會（ASCO）和美國病理家協會（CAP）近期聯合制定了乳腺癌HER2臨床檢測指南，并發表在2007年1月的協會期刊上，對HER2檢測所涉及的有關問題重新進行了定義和規范，其中某些內容已被FDA接受并即將實施。
專家組成員一致強調的HER2執行標準部分如下：
1.檢測僅應該針對浸潤性乳腺癌或乳腺癌的浸潤性部分；
2.組織處理的條件必須標準化，固定液為10%中性緩沖福爾馬林，固定時間是6-48小時，并且上述條件需在病理報告中標注；
3.在下列情況下，對HER2**組化和熒光原位雜交結果難以作出正確的評判：
v HER2**組化判定排除標準
（1）組織固定沒有使用中性緩沖福爾馬林；
（2）針吸標本在中性緩沖福爾馬林固定液中固定少于1小時；
（3）手術切除標本在中性緩沖福爾馬林固定液中固定少于6小時或超過48小時；
（4）具有邊緣收縮或擠壓人工假象的穿刺標本；
（5）在內部正常導管或小葉具有很強的膜染色的組織；
（6）對照組呈現非預想結果時；
v HER2熒光原位雜交排除標準
（1）浸潤性乳腺癌細胞數量少難以在UV光下界定的樣品；
（2）沒有使用中性緩沖福爾馬林固定組織；
（3）組織固定時間過長（超過48小時）；
（4）對照組呈現非預想結果；
（5）FISH信號不均一（一致性<75%）；
（6）出現背景彌散信號（>10%信號位于細胞漿）；
（7）不合適的酶消化（核分辨不清、持續性自發熒光）；
4.所采用的試驗步驟必須經過試驗證實可靠，新試驗結果需和經認證的可靠的試驗結果符合率在95%以上；
5.檢測步驟必須標準化，任何改動必須和原標準化步驟進行校正，專家組認為自動化染色平臺要優于人工操作，后者需要定期進行自檢；
6.每次試驗需設置標準對照，對照可以是細胞系或已知蛋白和基因表達情況的腫瘤組織，如果對照沒有出現預期結果，則不能對結果做出判定；
7.應用計算機圖像分析有益于結果的判定，但圖像分析系統需經過標準化確認，結果仍需病理學家確認；
8.HER2各種檢測結果的評判標準必須標準化，依據*新的臨床結果和各國所積累的經驗，評判標準還需要重新定義；
v HER2**組化判定標準
（1）檢查對照標本，如果不是預期結果，試驗需重復；
（2）陽性結果需超過30%的腫瘤細胞呈現完整的細胞膜染色方可判定；
（3）必須可見均一的強細胞膜完整染色；
（4）忽略不完整或淺的細胞膜染色；
（5）對于弱的細胞膜染色病例（1-2+）推薦使用定量圖像分析；
（6）如果細胞漿染色遮蓋了細胞膜染色，需重復試驗或進行FISH；
（7）如果正常導管或小葉呈現確定的染色，應棄去標本；
（8）如果存在模糊的人工假象，應棄去標本；
（9）避免判定導管內癌（DCIS），僅能對浸潤性導管癌進行打分；
v HER2熒光原位雜交判定標準
（1）復習相應的HE和**組化片，以確定浸潤性癌細胞所在的位置，原位癌不應加以評判；
（2）檢查對照標本，如果不是預期結果，試驗需重復；
（3）在兩個獨立的浸潤癌部分至少檢測20個非重疊的細胞；
（4）如果信號是非均一的（>25%），應棄去標本；
（5）如果自發熒光很強或細胞核分辨差，應棄去標本；
（6）如果背景染色影響信號的評判（>10%位于細胞漿）；
（7）如果HER2/CEP17比值在1.8~2.2之間，需其他人重復計算；
（8）如果是非均一性表達，需其他人重新計算；
（9）可由經過培訓的技術人員計算結果，但是需經病理醫生確認結果是否準確，采樣是否位于浸潤性腫瘤細胞；
9.HER2檢測報告必須標準化；
另外，專家組還對于開展上述檢測的實驗室標本檢測數量進行了規定，如果每年檢測數量很低，那么就不能保證結果的可靠性。
這份新的HER2檢測指南一經問世，就在美國病理學界引起了巨大的反響。起草指南的專家組主席Hammond認為新指南向病理學家傳遞了兩方面重要的信息：
1.對有關“陽性”、“可疑”和“陰性”結果的定義進行了重新修訂，牽涉到IHC和FISH兩種方法，同時對兩種方法的判定排除標準進行了詳盡的說明。每一種試驗都包括三種結果，即陽性、可疑和陰性。“陽性”定義為3+表達（IHC）和HER2基因/CEP17的比值大于2.2（FISH）；“可疑”定義為2+表達（IHC）和HER2基因/CEP17的比值是1.8-2.2（FISH）；“陰性”定義為0或1+表達（IHC）和HER2基因/CEP17的比值小于1.8-2.2（FISH），如果沒有17號染色體作為內對照，上述三種情況所對應的HER2基因拷貝數分別為>6、4~6和<4。對于可疑的IHC結果，必須進行基因擴增的檢測；對于可疑的FISH結果，可以重新計算切片中其它部位的細胞擴增數或重新檢測IHC。對于三種情況的定義，修改*大的是IHC3+需要大于30%的腫瘤細胞呈現強的、完整的細胞膜著色，而不是先前FDA定義的大于10%的腫瘤細胞（FDA已經接受了這種修改）。
2.強調HER2檢測質量保證體系的必要性并提出相應的具體措施。新指南指出現存的HER2檢測質量認證體系存在許多問題，必須予以強化并提出具體的方法，包括強制相應的檢測機構參加質量評定工作（目前美國只有25%~30%的實驗室參加）、使用已知基因擴增和蛋白表達情況的組織芯片（至少包括200例乳腺癌）、*終符合率要達到90%以上、每年至少檢測兩次（包括20個IHC和80個FISH標本）等，如果達不到要求，可以停止其檢測資格，當然這些措施會逐步實施，FDA已經同意逐步開展這項工作。
PhenoPath Laboratories的**病理學家Allen M.Gown認為新指南邁出了一大步，主要表現在兩個方面，一是促使病理學家和腫瘤學家相互合作，盡管這種必要性人人皆知，但是新指南為這種合作提供了一種程式化的模式；二是指出HER2檢測的*大影響因素在于試驗前期的各項工作，其中*為重要的影響因素是固定，病理學家今后也需要關注一下標本的固定方式和固定時間，這不僅僅是為了獲得滿意的HER2檢測結果，同時對其它病理科所檢測的各項指標都非常有益，比如*常檢測的ER也會因為固定的問題（6小時是所需要的*短的固定時間）而影響到檢測結果。

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